siRNA转染一篇全通:基因沉默从“进得去”到“敲得准”
来源:武汉普诺赛
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作者:百菱生物
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发布时间: 2天前
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文章主要围绕siRNA如何顺利“进入”细胞,到如何在细胞质中实现“敲得准”的靶向沉默,深入解析递送机制、转染体系优化策略及结果评估要点,为获得高效、稳定、可重复的基因沉默结果提供可参考的操作技术。
siRNA(小干扰RNA)凭借其高效且特异的mRNA降解能力,已成为实现靶向基因沉默的重要工具之一。然而,在实际操作过程中,siRNA转染实验的失败往往并非源于序列设计本身,而是受限于转染体系,如转染效率不理想、细胞毒性偏大以及实验结果重复性差等。
本期【细胞学堂】将围绕siRNA如何顺利“进入”细胞,到如何在细胞质中实现“敲得准”的靶向沉默,深入解析递送机制、转染体系优化策略及结果评估要点,为获得高效、稳定、可重复的基因沉默结果提供可参考的操作技术。
转染效率不足和细胞活力下降是导致siRNA转染实验失败的两个常见原因。siRNA发挥功能,要面临严峻的现实挑战:
物理屏障:siRNA本身带强负电荷,难以自主跨过同样带负电荷的质膜。
生化威胁:血清中含有丰富的核酸酶和胞内溶酶体,裸siRNA在标准培养条件下的半衰期不足5 min。
胞内陷阱:即使被细胞摄取,大多数siRNA仍被困于内吞体或被溶酶体降解,无法抵达作用位点——细胞质。
因此,必须借助转染试剂将其“打包”并送入细胞。这个过程中任何一个环节的偏差都可能导致整个实验功亏一篑,无论是细胞状态不佳、试剂选择错误,还是操作条件不当。
二、转染试剂的本质:
不只是“搬运工”,更是“护航者”
市售转染试剂多为阳离子脂质或聚合物,其辅助siRNA进入细胞的过程,本质上是一场穿越多重防御系统的“微观长征”:
带正电的转染试剂与带负电的siRNA通过电荷相互作用,形成稳定的纳米级复合物,既保护了核酸,又为后续内吞做好准备。
复合物通过网格蛋白依赖或非依赖的内吞途径被细胞“吞入”,形成内吞体。这一阶段,核酸仍然被包裹在囊泡中,处于相对保护状态。
内体逃逸是转染效率的关键限速步骤。复合物必须在内体酸化并与溶酶体融合前,成功逃逸到到细胞质中,否则,siRNA将被运往溶酶体降解。
成功逃逸的siRNA双链在细胞质中解旋,其中反义链被装载进RNA诱导的沉默复合体(RISC)中。
RISC复合物以siRNA反义链为引导,识别并切割完全互补的靶mRNA,导致其降解,实现基因沉默。
siRNA转染的核心挑战是:如何最大化“内体逃逸”成功的siRNA分子数量的同时,将对细胞的毒性干扰降到最低,可从以下关键环节进行优化:
细胞应处于对数生长期,状态健康。贴壁细胞转染时,推荐汇合度为50%-70%。悬浮细胞按对数期调整。细胞密度过低或过高都可能影响转染效率。
转染试剂是决定递送效率的关键因素。建议优先使用针对特定细胞设计的siRNA专用转染试剂,而非通用型转染试剂。难转染细胞需测试多种转染试剂。
转染效率和细胞毒性均受转染试剂与siRNA用量的影响。转染试剂不足会导致递送效率低;过量则会增加细胞毒性。siRNA浓度过高不仅增加成本,还可能引发脱靶效应和细胞毒性。建议通过梯度实验优化:以24孔板为例,siRNA起始浓度设为10-50 nM(约10-50 pmol),调整转染试剂体积,筛选出基因沉默效果和细胞活力之间的最佳平衡点。
siRNA-转染试剂复合物在培养体系中作用时间过长会增加细胞毒性。对于敏感的细胞,建议转染4-6 h后更换为完全培养基。这有助于在维持高沉默效率的同时,显著改善细胞活力。
四、结果评估:
如何判断siRNA是否真的“做对了”
荧光标记siRNA:在优化初期,使用带有荧光标记(如FAM)的siRNA,通过流式细胞术或荧光显微镜可以直观、快速地评估细胞对复合物的摄取效率,而不必等待功能学结果的验证,是优化条件的利器。
mRNA水平:转染24-48 h后,qPCR检测靶基因mRNA表达量。此时,mRNA敲低效果通常最显著。不同细胞类型和siRNA强度可能略有差异。
蛋白水平检测(Western Blot等):蛋白水平下降通常滞后于mRNA,是因为需要时间消耗已有的蛋白库。检测时间点一般为转染48-96 h后,具体取决于靶蛋白的半衰期。
每次实验必须包含阳性对照(如靶向看家基因的siRNA)以验证转染体系和检测方法的有效性;以及阴性对照(如乱序序列的siRNA)以排除非特异性效应。
操作环境、枪头、耗材等可能携带RNA酶,微量污染就足以降解siRNA。务必使用无RNA酶认证的耗材,并在洁净区域操作。
贴壁细胞与悬浮细胞的转染流程存在本质区别。悬浮细胞通常在转染当天收集、洗涤,以保证转染一致性。
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